Кожа байкальской нерпы (Pusa sibirica, Phocidae): норма и патология

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

С помощью анатомических и гистологических методов мы изучили норму и патологические изменения кожного покрова у 12 разновозрастных особей байкальской нерпы (Pusa sibirica) (алопеция, язвы, шрамы и др.). Такие изменения обычно присутствуют у многих особей, выходящих на береговые лежбища. Норма: кожа имеет складчатый эпидермис на теле и ластах. Отмечен гиперкератоз эпителия. Граница между сосочковым и сетчатым слоями дермы не выражена. Сосочковый слой образован тонкими пучками коллагеновых волокон, сетчатый слой сформирован толстыми пучками коллагеновых волокон. В сетчатом слое кожи туловища присутствуют мощные, многочисленные пучки гладких мышц. Дерма кожи ласт тоньше в сравнении с дермой кожи туловища нерп. В коже тела сальные железы небольшие многодольчатые, каждый волосяной пучок окружают, как правило, две такие железы. Нижние секреторные отделы апокриновых потовых желез слабо извитые трубчатые, располагаются в глубоких слоях сетчатой дермы и в жировой клетчатке отдельно от волосяных фолликулов и рядом с сетью кровеносных сосудов. Их узкие выводные протоки открываются в воронку волоса на уровне его верхней трети. В коже ласт крупные извитые апокриновые железы залегают на уровне нижних отделов луковиц остевых волос, удлиненные полиморфные выводные протоки сальных желез открываются в волосяные сумки. Обсуждаются морфофизиологические адаптации кожного покрова нерп, способствующие улучшению его гидродинамических, терморегуляторных и солнцезащитных свойств. Патология: выявлены два основных комплекса патологий кожи нерпы: 1) койлоцитоз, субэпидермальное воспаление (инфильтрат представлен лимфоцитами с небольшой примесью гистиоцитов), экзоцитоз лимфоцитов в волосяные фолликулы с явлениями спонгиоза; 2) формирование субэпидермального пузыря с нейтрофильной инфильтрацией в сосочковом слое дермы. Эти патологии могут быть связаны с потеплением климата и изменением ледового режима Байкала, что привело к возникновению иммунных воспалительных процессов в коже. Не исключено и воздействие неизвестного вирусного патогена, вызвавшего койлоцитоз у нерп.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

И. В. Аникиенко

ФГБОУ ВО Иркутский государственный аграрный университет имени А. А. Ежевского

Автор, ответственный за переписку.
Email: babushcinai@mail.ru
Россия, Иркутская обл.

Н. И. Рядинская

ФГБОУ ВО Иркутский государственный аграрный университет имени А. А. Ежевского

Email: ryadinskaya.nina@mail.ru
Россия, Иркутская обл.

Е. А. Петров

Байкальский музей Иркутского Научного центра

Email: evgen-p@yandex.ru
Россия, Иркутская обл.

К. Ю. Костюнин

ФГБОУ ВО Иркутский государственный медицинский университет Министерства здравоохранения Российской Федерации; Иркутский диагностический центр

Email: kostjunin@gmail.com
Россия, Иркутск; Иркутск

С. Е. Белова

ФГБОУ ВО Иркутский государственный аграрный университет имени А. А. Ежевского

Email: sonab5215@gmail.com
Россия, Иркутская обл.

Д. Р. Иконникова

ФГБОУ ВО Иркутский государственный аграрный университет имени А. А. Ежевского

Email: dasha2002.30anim@gmail.com
Россия, Иркутская обл.

Список литературы

  1. Автандилов Г. Г., 1990. Медицинская морфометрия. Руководство. М.: Медицина. 384 с.
  2. Баранов В. И., Баранов Е. А., Елагин О. К., Петров Е. А., Шошенко К. А., 1988. Кровоток в коже и подкожном жире байкальской нерпы // Журнал эволюционной биохимии и физиологии. Т. 24. № 3. С. 437– 444.
  3. Баранов В. И., Елагин О. К., Корохов В. П., Петров Е. А., Чермных Н. А. и др., 1992. Органное кровообращение байкальской нерпы при изменении температуры и нырянии // Бионика. № 25. С. 98–108.
  4. Белькович В. М., 1964. Строение кожного покрова некоторых ластоногих. Морфологические особенности водных млекопитающих. М.: Наука. С. 5–47.
  5. Гармаев Б. Ц., Цыбикжапов А. Д., Сиразиев Р. З., 2013. Структурно-функциональная организация кожно-волосяного покрова байкальской нерпы: монография. Улан-Удэ: Бурятская ГСХА им. В. Р. Филиппова. 77 с.
  6. Грушко М. П., Володина В. В., 2023. Морфология кожного покрова каспийского тюленя (Phoca caspica Gmelin, 1788) // Актуальные вопросы ветеринарной медицины. № 1 (57). С. 60–63.
  7. Иванов М. К., 1982. Кожно-волосяной покров байкальской нерпы // Морфофизиологические и экологические исследования байкальской нерпы. Новосибирск: Наука. С. 20–39.
  8. Лилли Р., 1969. Патогистологическая техника и практическая гистохимия. М.: Мир. 646 с.
  9. Мордвинов Ю. Е., 1984. Функциональная морфология плавания птиц и полуводных млекопитающих. Киев: Наук. думка. 168 с.
  10. Мордвинов Ю. Е., Куратов Б. В., 1972. Влияние волосяного покрова некоторых видов настоящих тюленей (Phocidae) на величину общего гидродинамического сопротивления // Зоологический журнал. Т. 51. № 2. С. 242–247.
  11. Мяделец О. Д., 2000. Клеточные механизмы барьерно-защитных функций кожи и их нарушения при кожной патологии. Витебск: Издательство Витебского государственного медицинского университета. 283 с.
  12. Пастухов В. Д., 1993. Нерпа Байкала: биологические основы рационального использования и охраны ресурсов. Новосибирск: ВО “Наука”. 272 с.
  13. Петров Е. А., 2009. Байкальская нерпа. Улан-Удэ: ИД “Экос”. 176 с.
  14. Петров Е. А., Елагин О. К., Баранов В. И., Шошенко К. А., 1998. Сосудистые реакции у байкальской нерпы Pusa sibirica при разных типах ныряний // Журнал эволюционной биохимии и физиологии Т. 34. № 1. С. 50–56.
  15. Петров Е. А., Купчинский А. Б., Фиалков В. А., Бадардинов А. А., 2021. Значение береговых лежбищ в жизни байкальской нерпы (Pusa sibirica Gmelin 1788, Pinnipedia). 1. Обзор // Зоологический журнал. Т. 100. № 5. С. 590–600.
  16. Петров Е. А., Купчинский А. Б., Фиалков В. А., Бадардинов А. А., 2021а. Значение береговых лежбищ в жизни байкальской нерпы (Pusa sibirica Gmelin 1788, Pinnipedia). 3. Функционирование лежбищ байкальской нерпы на острове Тонкий (Ушканьи острова, оз. Байкал) по материалам видеонаблюдений // Зоологический журнал. Т. 100. № 7. С. 823– 840.
  17. Петров Е. А., Купчинский А. Б., 2023. Растянутая линька на фоне потепления климата – основная причина выхода байкальской нерпы (Pusa sibirica, Pinnipedia) на береговые лежбища // Зоологический журнал. Т. 102. № 2. С. 201–214.
  18. Рядинская Н. И., Аникиенко И. В., Иконникова Д. Р., Ильина О. П., Карпова Е. А. и др., 2020. Скелет байкальской нерпы. Молодежный: Издательство Иркутского государственного аграрного университета им. А. А. Ежевского. 61 с.
  19. Соколов В. Е., 1973. Кожный покров млекопитающих. М.: Наука. 487 с.
  20. Соколов В. Е., Скурат Л. Н., Степанова Л. В., Сумина Е. Б., Шабадаш С. А., 1988. Руководство по изучению кожного покрова млекопитающих. М.: Наука. 280 с.
  21. Соколов В. Е., Чернова О. Ф., 2001. Кожные железы млекопитающих. М.: ГЕОС. 648 с.
  22. Amano M., Miyazaki N., Petrov E. A., 2000. Age determination and growth of Baikal seals (Phoca sibirica) // Advances in Ecological Research. V. 31. P. 449–462.
  23. Antiga E., Caproni M., 2015. The diagnosis and treatment of dermatitis herpetiformis // Clin. Cosmet. Investig Dermatol. V. 8. P. 257–265.
  24. Barragán-Vargas C., Montano-Frías J., Ávila Rosales G., Godínez-Reyes C.R., Acevedo-Whitehouse K., 2016. Transformation of the genital epithelial tract occurs early in California sea lion development // R. Soc. open sci. V. 3. № 3. P. 150419.
  25. Becher P., König M., Müller G., Siebert U., Thiel H. J., 2002. Characterization of sealpox virus, a separate member of the parapoxviruses // Arch. Virol. V. 147. P. 1133–1140.
  26. Beckmen K. B., Lowenstine L. J., Newman J., Hill J., Hanni K., Gerber J., 1997. Clinical and pathological characterization of northern elephant seal skin disease // J. Wildlife Diseases. V. 33. № 3. P. 438–449.
  27. Beltran R., Burns J., Breed G., 2018. Convergence of biannual moulting strategies across birds and mammals // Proceedings of the Royal Society B: Biological Sciences. V. 285. P. 20180318.
  28. Bergin I. L., Bell J. D., Chen Z., Zochowski M. K., Chai D. et al., 2013. Novel Genital Alphapapillomaviruses in Baboons (Papio hamadryas Anubis) With Cervical Dysplasia // Veterinary Pathology. V. 50. № 1. P. 200–208.
  29. Buckles E. L., Lowenstine L. J., Funke C., Vittore R. K., Wong H. N. et al., 2006. Otarine Herpesvirus-1, not papillomavirus, is associated with endemic tumours in California sea lions (Zalophus californianus) // Journal of Comparative Pathology. V. 135. № 4. P. 183–189.
  30. Colegrove K. M., Burek-Huntington K.A., Roe W., Siebert U., 2018. Chapter 23 – Pinnipediae // Pathology of Wildlife and Zoo Animals. Terio K. A., McAloose D., Leger J. St. (Ed.). Academic Press. P. 569–592.
  31. Dierauf L. A., Guland F. M.D., 2001. Handbook of Marine Mammal Medicine. Boca Raton, Florida: CRC Press.
  32. Dunn J. L., Buck J. D., Spotte S., 1984. Candidiasis in captive pinnipeds // J. Am. Vet. Med. Assoc. V. 185. № 11. P. 1328–1330.
  33. Gonzales-Viera O., Marigo J., Ruoppolo V. C., Rosas F. C.W., Bertozzi C. P., Catão-Dias J.L., 2012. Occurrence of Toxoplasma gondii, Papillomavirus and Poxvirus Infections in Brazilian Dolphins // Materials American Association of Zoo Veterinarians Conference, 2012, Oakland (California, USA) [Электронный ресурс]. Режим доступа: https://www.vin.com/apputil/content/defaultadv1.aspx?pId=11367&catId=152766&id=9846859&ind=115&objTypeID=17. (Дата обновления: 15.01.24).
  34. Goodman S., 2016. Pusa sibirica, Baikal seal // The IUCN Red List of Threatened Species. P. 1–17.
  35. Guerrero A. I., Rogers T. L., Sepúlveda M., 2021. Conditions influencing the appearance of thermal windows and the distribution of surface temperature in hauled-out southern elephant seals // Conservation Physiology. V. 9. № 1. P. coaa141.
  36. Khamas W. A., Smodlaka H., Leach-Robinson J., Palmer L., 2012. Skin histology and its role in heat dissipation in three pinniped species // Acta Vet Scand. V. 54. № 1. P. 46.
  37. Krmpotic C. M., Loza C. M., Negrete J., Scarano A. C., Carlini A. A. et al., 2018. Integument in Antarctic seals: A comparative study and its relation to extreme environments // Acta Zool. V. 99. № 3. P. 281–295.
  38. Ling J. K., 2012. The skin and hair of the southern elephant seal, Mirounga leonina (Linn.). IV. Annual cycle of pelage follicle activity and moult // Australian Journal of Zoology. V. 60. № 4. P. 259–271.
  39. Ling J. K., 2018. A histological study of the skin, hair follicles and moult of the hooded seal (Cystophora cristata [Erxleben, 1777]) // Polar Research. V. 37. № 1. P. 1419906.
  40. Lipscomb T. P., Mense M. G., Habecker P. L., Taubenberger J. K., Schoelkopf R., 2001. Morbilliviral dermatitis in seals // Vet Pathol. V. 38. № 6. P. 724–726.
  41. Mamaev L. V., Denikina N. N., Belikov S. I., Volchkov V. E., Visser I. K.G. et al., 1995. Characterisation of morbilliviruses isolated from Lake Baikal seals (Phoca sibirica) // Veterinary Microbiology. V. 44. P. 251–259.
  42. Müller G., Gröters S., Siebert U., Rosenberger T., Driver J. et al., 2003. Parapoxvirus infection in harbor seals (Phoca vitulina) from the German North Sea // Vet. Pathol. V. 40. № 4. P. 445–454.
  43. Pfeiffer C. J., Rowntree V. J., 1996. Epidermal ultrastructure of the southern right whale calf (Eubalaena australis) // J Submicrosc Cytol Pathol. V. 28. № 2. P. 277– 286.
  44. Pollock C. G., Rohrbach B., Ramsay E. C., 2000. Fungal dermatitis in captive pinnipeds // Journal of zoo and wildlife medicine. V. 31. № 3. P. 374–378.
  45. Reeb D., Best P., Kidson S., 2007. Structure of the integument of southern right whales, Eubalaena australis // Anatomical record. V. 290. P. 596–613.
  46. Ringwaldt E. M., Brook B. W., Carver S., Buettel J. C., 2021. The Patterns and Causes of Dermatitis in Terrestrial and Semi-Aquatic Mammalian Wildlife // Animals. V. 11. № 6. P. 1691.
  47. Ryadinskaya N., Meltsov I., Tabakova M., Anikienko I., Sayvanova S. et al., 2020. Identification of causes of death of Baikal seal (Pusa sibirica Gmelin, 1788) // Turkish Journal of Zoology. V. 44. P. 60–63.
  48. Taurisano N. D., Butler B. P., Stone D., Hariharan H., Fields P. J. et al., 2018. Streptococcus phocae in marine mammals of northeastern pacific and arctic Canada: a retrospective analysis of 85 postmortem investigations // J. Wildlife Diseases. V. 54. № 1. P. 101–111.
  49. Van Bressem M.-F., Van Waerebeek K., Pierard G. E., Desaintes C., 1996. Genital and lingual warts in small cetaceans from coastal Peru // Diseases of Aquatic Organisms. V. 26. P. 1–10.
  50. Walcott S. M., Kirkham A. L., Burns J. M., 2020. Thermoregulatory costs in molting Antarctic Weddell seals: impacts of physiological and environmental conditions: Themed Issue Article: Conservation of Southern Hemisphere Mammals in a Changing World // Conserv Physiol. V. 8. № 1. P. coaa022.
  51. Wright E. P., Waugh L. F., Goldstein T., Freeman K. S., Kelly T. R. et al., 2015. Evaluation of viruses and their association with ocular lesions in pinnipeds in rehabilitation // Vet Ophthalmol. V. 18. № s1. P. 148–159.
  52. Wu Q., Wang Y., Zhang X., Gu X., He H., Jin X., 2023. Pyogranulomatous dermatitis with Enterococcus faecalis in a spotted seal (Phoca larga) // Veterinary Medicine and Science. V. 9. № 2. P. 985–991.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать
2. Рис. 1. Поражения кожи у байкальской нерпы на лежбище в 2017 г. (A) и 2021 г. (B). Фото Е. А. Петрова с материалов видеосъемки. Из: Петров и др. (2021а).

Скачать (1MB)
Метаданные
3. Рис. 2. Неокрашенный срез основания клыка самца байкальской нерпы (№ 10, самец, возраст 6+ лет): ц – цемент, д – дентин, 1–6 – годовые кольца дентина. Увеличение ×40.

Скачать (785KB)
Метаданные
4. Рис. 3. Шрамы на коже у взрослых самок № 8 (A) и № 12 (B): ш – шрам.

Скачать (1MB)
Метаданные
5. Рис. 4. Участки алопеций на коже байкальской нерпы (слева, сверху вниз – № 1, самка, 2+; № 2, самка, 1+; № 4, самец, 1+; справа – № 5, самка, 2+).

Скачать (1MB)
Метаданные
6. Рис. 5. Тангенциальное сечение кожи байкальской нерпы (№ 2, самка, 1+) в области груди: уф – устье волосяного фолликула, сж – сальная железа, пф – первичный фолликул, вф – вторичный фолликул (стрелки), фв – волосяной фолликул, пж – потовые железы (наконечники стрелок). На врезке – увеличенный участок эпителия с того же слайда, в эпителии видны гранулы пигмента: рс – роговой слой, шс – шиповатый слой, бс – базальный слой (стрелка). Окраска гематоксилином с эозином.

Скачать (2MB)
Метаданные
7. Рис. 6. Складки эпителия байкальской нерпы в коже туловища (A) (№ 2, самка, 1+) и ласт (B, С) (№ 5, самка, 2+): гс – грибовидные складки, ос – округлые складки, чс – чешуйчатые складки. Окраска гематоксилином с эозином (A, B), окраска Вейгерт – Ван Гизон (С).

Скачать (799KB)
Метаданные
8. Рис. 7. Дерма (A) и потовые железы ласт (B) нерпы (№ 3, самка, 1+): фв – волосяной фолликул, сж – сальная железа, вс – волосяной сосочек, пж – потовая железа, стрелки указывают на гладкомышечные клетки. Окраска гематоксилином с эозином.

Скачать (1MB)
Метаданные
9. Рис. 8. Гладкие мышцы дермы байкальской нерпы (№ 9, самец, 2+): сд – сетчатый слой дермы, гм – пучки гладких мышц (указывают стрелки), пк – подкожная жировая клетчатка (гиподерма). Окраска гематоксилином с эозином.

Скачать (1MB)
Метаданные
10. Рис. 9. Койлоцитоз в коже брюшной стенки (A; № 7, самец, 7+) и спины (B; № 4, самец, 1+) байкальской нерпы: рс – роговой слой эпителия, зс – зернистый слой (стрелки указывают на уплощенные веретеновидные клетки), шс – шиповатый слой, бс – базальный слой (указан стрелкой), к – койлоциты с лунообразными ядрами и койлоциты с центрально расположенным ядром (указывают стрелки). Окраска гематоксилином с эозином.

Скачать (1MB)
Метаданные
11. Рис. 10. Койлоцитоз в эпителии волосяных фолликулов ласт (№ 1, самка, 2+): к – койлоциты эпителия наружных влагалищ волосяного фолликула (показаны стрелками), сж – сальная железа. Окраска Вейгерт – Ван Гизон.

Скачать (1MB)
Метаданные
12. Рис. 11. Воспаление в дерме кожи ласт байкальской нерпы (№ 5, самка, 2+) (A) с участками периваскулярного (B) и перифолликулярного (C) скопления инфильтрата (лимфоциты с примесью гистиоцитов): с – сосуды (указаны стрелкой), фв – волосяной фолликул. Окраска гематоксилином с эозином.

Скачать (2MB)
Метаданные
13. Рис. 12. Миграция лимфоцитов в волосяной фолликул (экзоцитоз) и спонгиоз эпителиоцитов эпителия волосяного влагалища (№ 1, самка, 2+): фв – волосяной фолликул, л – лимфоциты, мигрирующие в фолликул (указаны стрелками). В выделенных желтым цветом областях показаны эпителиоциты с признаками спонгиоза (отечные эпителиоциты, отделенные друг от друга). Окраска гематоксилином с эозином.

Скачать (1MB)
Метаданные
14. Рис. 13. Субэпидермальный пузырь (A) и инфильтрация дермы нейтрофилами (B) у нерпы № 6 (самка, 7+): сп – полость субэпидермального пузыря, желтым выделен один из участков нейтрофильной инфильтрации дермы. Окраска гематоксилином с эозином.

Скачать (1MB)
Метаданные

© Российская академия наук, 2025