Испытания разработанного набора реагентов для выявления возбудителей кишечных инфекций методом изотермической амплификации ДНК
- Авторы: Давыдова Е.Е.1, Толоконцева А.А.1, Лупарев А.Р.1, Полякова В.А.1, Григорьева Т.Д.2, Шипулин Г.А.1
-
Учреждения:
- Центр стратегического планирования и управления медико-биологическими рисками здоровью
- Клиническая инфекционная больница им. С.П. Боткина
- Выпуск: Том 69, № 9 (2024)
- Страницы: 210-220
- Раздел: Оригинальные исследования
- Статья опубликована: 10.02.2025
- URL: https://kld-journal.fedlab.ru/0869-2084/article/view/641905
- DOI: https://doi.org/10.17816/cld641905
- ID: 641905
Цитировать
Полный текст



Аннотация
Обоснование. Изотермическая петлевая амплификация LAMP (Loop-Mediated Isothermal Amplification) — перспективный для диагностики инфекционных заболеваний метод, имеющий высокий потенциал перехода к формату тестов «у постели больного». Он применяется для обнаружения широкого спектра возбудителей инфекционных заболеваний, однако подобные тесты для выявления возбудителей кишечных инфекций в Российской Федерации практически отсутствуют.
Цель — испытания диагностического набора реагентов для выявления ДНК возбудителей кишечных инфекций Shigella spp., энтероинвазивных E. coli, Salmonella spp., термофильных Campylobacter и кишечных аденовирусов группы F методом LAMP.
Материалы и методы. Использовали в качестве мишеней для амплификации фрагменты генов ipaH Shigella, invA Salmonella, CJE0832 кампилобактерий C. jejuni и C. coli, гена белка гексона аденовируса F 40. Клинические образцы получали от пациентов с характерными симптомами диареи и от пациентов без симптомов, всего 254 образца. Для приготовления экстракта кала готовили 10% суспензию в фосфатно-солевом буфере, осаждали твёрдые частицы. Для выделения ДНК из экстрактов использовали наборы реагентов «АмплиТест® Рибо-Преп» (РУ № РЗН 2020-12985, 22.12.2020) и «АмплиТест® Магно-Сорб-Комбо» (РУ № РЗН 2022_19200, 21.12.2022) производства ФГБУ «ЦСП» ФМБА России. Результаты амплификации детектировали с использованием специфических флуоресцирующих зондов, амплификацию проводили в мультиплексном формате с использованием двух смесей, первая из которых позволяет выявлять ДНК Shigella и EIEC, Campylobacter и ВКО, а вторая — ДНК аденовирусов группы F и Salmonella.
Результаты. Аналитическую чувствительность оценивали на модельных образцах биоматериала, содержащих ДНК целевых мишеней с известной концентрацией. Показано, что ДНК Shigella, EIEC, Salmonella, Campylobacter и аденовирусов группы F воспроизводимо выявляется в концентрации не менее 5×103 копий/мл (общее количество повторов n =60). Cпецифичность подтверждена на панели ДНК штаммов аденовирусов различных типов и ДНК бактериальных штаммов. При исследовании 254 клинических образцов показано совпадение результатов, полученных разработанным протоколом на основе LAMP и методом ПЦР (набор сравнения «АмплиСенс® ОКИ-скрин-FL»). Диагностическая чувствительность LAMP протокола составила не менее 92,6%, специфичность — не менее 98,2% с учётом доверительной вероятности ( p =0,95). Высокие аналитические и диагностические характеристики разработанного набора реагентов «АмплиТест® OKI LAMP» были подтверждены при проведении клинико-лабораторных испытаний, набор зарегистрирован в качестве медицинского изделия для диагностики in vitro (РУ РЗН 2024/23503 от 04.09.2024).
Заключение. Разработанный набор реагентов на основе LAMP позволяет выявлять кишечные патогены за время, не превышающее один час, и имеет аналитические и диагностические характеристики, сравнимые с ПЦР.
Полный текст

Об авторах
Екатерина Евгеньевна Давыдова
Центр стратегического планирования и управления медико-биологическими рисками здоровью
Автор, ответственный за переписку.
Email: EDavydova@cspfmba.ru
ORCID iD: 0000-0003-2926-0490
SPIN-код: 9002-4486
канд. хим. наук
Анна Андреевна Толоконцева
Центр стратегического планирования и управления медико-биологическими рисками здоровью
Email: ATolokonceva@cspmz.ru
ORCID iD: 0000-0002-8757-081X
SPIN-код: 3616-2430
Россия, 119121, Москва, ул. Погодинская, 10, стр. 1
Андрей Русланович Лупарев
Центр стратегического планирования и управления медико-биологическими рисками здоровью
Email: ALuparev@cspfmba.ru
ORCID iD: 0000-0001-8324-5326
SPIN-код: 5194-6139
Россия, 119121, Москва, ул. Погодинская, 10, стр. 1
Валерия Александровна Полякова
Центр стратегического планирования и управления медико-биологическими рисками здоровью
Email: VPolyakova@cspfmba.ru
ORCID iD: 0000-0002-2579-0665
SPIN-код: 7524-6104
Россия, 119121, Москва, ул. Погодинская, 10, стр. 1
Тамара Дмитриевна Григорьева
Клиническая инфекционная больница им. С.П. Боткина
Email: tamara.doc@mail.ru
ORCID iD: 0009-0008-8443-0038
Россия, Санкт-Петербург
Герман Александрович Шипулин
Центр стратегического планирования и управления медико-биологическими рисками здоровью
Email: Shipulin@cspfmba.ru
ORCID iD: 0000-0002-3668-6601
SPIN-код: 1908-9098
канд. мед. наук
Россия, 119121, Москва, ул. Погодинская, 10, стр. 1Список литературы
- Gallichan S., Perez-Sepulveda B.M., Feasey N.A., et al. Multiplex PCR Assay for Clade Typing of Salmonella enterica Serovar Enteritidis // Microbiol Spectr. 2022. Vol. 10, N 6. P. e03182-22. doi: 10.1128/spectrum.03182-22
- Lee M.Y., Phan V.M., Lee W.I., et al. Developing a Loop-Mediated Isothermal Amplification Assay for the Rapid Detection of Seven Respiratory Viruses including SARS-CoV-2 // Medicina. 2022. Vol. 58, N 9. P. 1224. doi: 10.3390/medicina58091224
- Nagai K., Horita N., Yamamoto M., et al. Diagnostic test accuracy of loop-mediated isothermal amplification assay for Mycobacterium tuberculosis: systematic review and meta-analysis // Sci Rep. 2016. Vol. 6. P. 39090. doi: 10.1038/srep39090
- Fan Q., Xie Z., Wei Y., et al. Development of a visual multiplex fluorescent LAMP assay for the detection of foot-and-mouth disease, vesicular stomatitis and bluetongue viruses // PLoS One. 2022. Vol. 17, N 12. P. e0278451. doi: 10.1371/journal.pone.0278451
- Kline E.C., Panpradist N., Hull I.T., et al. Multiplex Target-Redundant RT-LAMP for Robust Detection of SARS-CoV-2 Using Fluorescent Universal Displacement Probes // Microbiol Spectr. 2022. Vol. 10, N 4, P. e0158321. doi: 10.1128/spectrum.01583-21
- Song T., Toma C., Nakasone N., Iwanaga M. Sensitive and rapid detection of Shigella and enteroinvasive Escherichia coli by a loop-mediated isothermal amplification method // FEMS Microbiol Lett. 2005. Vol. 243, N 1. P. 259–263. doi: 10.1016/j.femsle.2004.12.014
- Vu D.T., Sethabutr O., Von Seidlein L., et al. Detection of Shigella by a PCR Assay Targeting the ipaH Gene Suggests Increased Prevalence of Shigellosis in Nha Trang, Vietnam // J Clin Microbiol. 2004. Vol. 42, N 5. P. 2031–2035. doi: 10.1128/JCM.42.5.2031-2035.2004
- Rahn K., De Grandis S.A., Clarke R.C., et al. Amplification of an invA gene sequence of Salmonella typhimurium by polymerase chain reaction as a specific method of detection of Salmonella // Mol Cell Probes. 1992. Vol. 6, N 4. P. 271–279. doi: 10.1016/0890-8508(92)90002-f
- Costa D., Iraola G. Pathogenomics of Emerging Campylobacter Species // Clin Microbiol Rev. 2019. Vol. 32, N 4. P. e00072-18. doi: 10.1128/CMR.00072-18
- Shuryaeva A.K., Malova T.V., Tolokonceva A.A., et al. Development and application of LAMP assays for the detection of enteric adenoviruses in feces // Microbiol Spectr. 2022. Vol. 10, N 4. P. e0051622. doi: 10.1128/spectrum.00516-22
- Kumar S., Stecher G., Li M., Knyaz C., Tamura K. MEGA X: Molecular Evolutionary Genetics Analysis across Computing Platforms // Molecular Biology and Evolution. 2018. Vol. 35, N 6. P. 1547–1549. doi: 10.1093/molbev/msy096
- Yaren O., Alto B.W., Gangodkar P.V., et al. Point of sampling detection of Zika virus within a multiplexed kit capable of detecting dengue and chikungunya // BMC Infect Dis. 2017. Vol. 17. P. 293. doi: 10.1186/s12879-017-2382-0
Дополнительные файлы
